Каталог профилей
InvitroСкрининговое ПЦР-исследование ДНК возбудителей гельминтозов (описторхоза, аскаридоза, дифиллоботриоза, тениоза, энтеробиоза), тест-система Гельмо-скрин (Screening PCR of the DNA of helminthiasis pathogens. Gelmo-screen assay)
Описание обследования
Метод определенияПЦР с детекцией в режиме реального времени.
Исследуемый материал
Кал
A26.19.010.000.01 (Номенклатура МЗ РФ, Приказ №804н)
Синонимы: Анализ кала на гельминтов методом ПЦР.
Helmo-screen of helminthiasis (enterobiasis, ascariasis, diphyllobothriasis, opisthorchiasis, teniasis), PCR.
Краткая характеристика исследования «Гельмо-скрин. Скрининговое ПЦР-исследование возбудителей гельминтозов»
Распространенность гельминто-протозойных инфекций достаточно высока. Паразитозы способствуют более частому возникновению соматических и обострению хронических заболеваний, оказывая многостороннее воздействие на организм хозяина.
Гельминтозы широко распространены как в развитых, так и в развивающихся странах. Инфекции, вызываемые гельминтами, часто клинически бессимптомны, но могут быть связаны с эозинофилией и/или длительными желудочно-кишечными симптомами.
Гельминты могут вызывать значительные повреждения в организме человека и даже приводить к смерти.
Существующая диагностика гельминтозов, основанная на микроскопическом исследовании образцов кала человека на наличие яиц паразитов, имеет ряд недостатков, в частности, недостаточно высокую чувствительность, особенно на ранних стадиях развития паразита. Поэтому своевременная верификация диагноза требует разработки и внедрения новых молекулярно-биологических методов исследования, таких как ПЦР и MALDI–TOFMS.
С какой целью выполняют исследование «Гельмо-скрин. Скрининговое ПЦР-исследование возбудителей гельминтозов»
Метод ПЦР позволяет обнаружить ДНК паразитов за один цикл, обеспечивает высокую специфичность и чувствительность анализа, существенно сокращая время его проведения. Специфичная видовая дифференцировка возбудителей при помощи ПЦР в режиме реального времени осуществима даже на ранних стадиях болезни. Точность ПЦР-анализа при обнаружении гельминтов в сравнении с микроскопией варьирует от 91% до 100% и позволяет выявлять многих паразитов, за исключением нематод (ложноотрицательные результаты возможны до 20% случаев).
При подозрении на энтеробиоз предпочтительным материалом для исследования является соскоб с поверхности перианальных складок (см. тест № 1601). Соскоб не подходит для выполнения ПЦР-исследования.
При обнаружении пациентом в фекалиях фрагментов плоских червей или особей круглых червей для их идентификации необходимо обращаться в региональный Центр эпидемиологии и гигиены или в инфекционную больницу
Использование высокочувствительного, быстрого и масштабируемого метода ПЦР может иметь важное значение в диагностике геогельминтозов, оценке интенсивности инфекции, мониторинге эффективности лечения.
Литература
1. Нагорный С. А., Ермакова Л. А., Киосова Ю. В. Дирофиляриозы человека: клинические и эпидемиологические аспекты //Теория и практика паразитарных болезней животных. – 2020. – №. 21.
2. Одинцева В. Е., Александрова В. А. Современные особенности клинических проявлений, методов диагностики и лечения гельминтно3протозойных инвазий у детей //Вестник Северо-Западного государственного медицинского университета им. ИИ Мечникова. – 2010. – Т. 2. – №. 1.
3. Середина Т. А. и др. Набор реагентов для выявления Metorchis bilis, Opisthorchis viverrini и Clonorchis sinensis, Opisthorchis felineus возбудителей описторхидоза методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени //Клиническая лабораторная диагностика. – 2014. – Т. 59. – №. 8.
4. Autier B. et al. Comparison of three commercial multiplex PCR assays for the diagnosis of intestinal protozoa //Parasite. – 2018. – Т. 25.
5. Autier B., Gangneux J. P., Robert-Gangneux F. Evaluation of the Allplex™ GI-Helminth (I) Assay, the first marketed multiplex PCR for helminth diagnosis //Parasite. – 2021. – Т. 28.
6. Keller L. et al. Performance of the Kato-Katz method and real time polymerase chain reaction for the diagnosis of soil-transmitted helminthiasis in the framework of a randomised controlled trial: treatment efficacy and day-to-day variation //Parasites & vectors. – 2020. – Т. 13. – №. 1. – С. 1-12.
7. O'Connell E. M., Nutman T. B. Molecular diagnostics for soil-transmitted helminths //The American journal of tropical medicine and hygiene. – 2016. – Т. 95. – №. 3. – С. 508-513. /
8. Rijsman L. H., Monkelbaan J. F., Kusters J. G. Clinical consequences of polymerase chain reaction‐based diagnosis of intestinal parasitic infections //Journal of gastroenterology and hepatology. – 2016. – Т. 31. – №. 11. – С. 1808-1815.
9. Van Lieshout L., Roestenberg M. Clinical consequences of new diagnostic tools for intestinal parasites //Clinical Microbiology and Infection. – 2015. – Т. 21. – №. 6. – С. 520-528.
