Каталог профилей
InvitroПосев мочи на микрофлору, определение чувствительности к антимикробным препаратам и бактериофагам, ускоренный результат (Fast urine Culture, Routine, quantitative. Aerobic Bacteria Identification. Antibiotic susceptibility and bacteriophage efficiency tes
Описание обследования
Метод определенияСкрининг – метод лазерного светорассеяния, на автоматическом анализаторе HB&L ALIFAX.
Второй этап (положительные пробы) – культуральный метод (посев на плотные питательные среды); идентификация выявленной микрофлоры методом времяпролетной масс-спектрометрии с помощью прибора Microflex Brucker Daltonik MALDI Biotyper, BRUKER, Германия; определение чувствительности к антимикробным препаратам диско-диффузионным методом с использованием анализатора ADAGIO, BIO-RAD, Франция; определение чувствительности к бактериофагам проводят путем посева бактериальной культуры на плотную питательную среду с последующим нанесением бактериофага (капельный метод).
Исследуемый материал
Моча (средняя порция)
ВНИМАНИЕ! Данное исследование не включает в себя обнаружение микоплазм, хламидий, вирусов, а также других микроорганизмов, требующих особых условий культивирования.
Синонимы: Скрининг бактериурии, экспресс-диагностика инфекций мочевыводящих путей (ИМП), ускоренный посев мочи на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам и бактериофагам.
Краткое описание исследования «Ускоренное исследование мочи на микрофлору с определением чувствительности к антимикробным препаратам и бактериофагам»
Ускоренное исследование мочи на микрофлору с определением чувствительности к антимикробным препаратам – количественное микробиологическое исследование мочи с применением технологии, основанной на методе лазерного светорассеяния, на автоматическом анализаторе HB&L ALIFAX, Италия. Автоматизированная технология бактериологического исследования мочи позволяет дифференцировать положительные и отрицательные пробы в течение 3-4 часов, при этом отсеять отрицательные пробы можно непосредственно в день получения образца. Параллельно с оценкой бактериальной обсемененности анализатор позволяет отслеживать оптическую плотность образца, что позволяет сразу получать стандартизованную суспензию для последующего анализа на антибиотикочувствительность и чувствительность к бактериофагам, а также провести идентификацию традиционными методами.
Инфекции мочевыводящих путей (ИМП) считаются одними из наиболее частых бактериальных инфекций человека и уступают по распространенности лишь респираторным инфекциям. Особенно подвержены ИМП женщины: у каждой пятой ИМП развивается, по меньшей мере, один раз в жизни. Заболеваемость ИМП возрастает:
на фоне диабета;
на фоне анатомических дефектов мочевыводящих путей;
с возрастом.
Кроме того, ИМП – наиболее распространенные внутрибольничные инфекции, чаще все обусловленные инвазивными диагностическими процедурами и использованием уретральных катетеров. Важную медицинскую проблему представляют ИМП у беременных женщин, поскольку развитие пиелонефрита может приводить:
к тяжелым осложнениям беременности;
к повышению риска преждевременных родов;
к рождению детей с низкой массой тела.
Стандартным методом выявления бактериурии при диагностике ИМП является бактериологический посев мочи, который считается «золотым стандартом». Однако данный метод имеет определенные недостатки, к которым относятся длительность исследования и получения результата. По сравнению с классическим микробиологическим исследованием мочи со сроком выполнения от 5 до 7 суток, ускоренный посев позволяет:
незамедлительно принимать решения о целесообразности антибиотикотерапии;
диагностировать бессимптомную бактериурию;
определять эффективность назначенного лечения.
Внедрение в лабораторную практику быстрого и надежного метода скрининга мочи на наличие бактериурии может значительно повысить эффективность лабораторных исследований и минимизировать влияние на результаты недостатков традиционных ручных методик. Использование методики быстрого посева позволяет снизить необоснованное назначение и оптимизировать применение антибактериальных препаратов.
Выделяемые микроорганизмы и возбудители:
энтеробактерии: E. coli, Enterobacter spp., Klebsiella spp., P. mirabilis, P. aeruginosa, P. vulgaris, Citrobacter spp., Morganella spp., Serratia spp.;
неферментирующие грамотрицательные микроорганизмы: Pseudomonas spp. (включая P. aeruginosa), Acinetobacter spp., Stenotrophomonas maltophilia;
стафилококки: S. saprophyticus, S. aureus;
стрептококки: S. agalactiae;
дрожжеподобные грибы (скрининговое выявление)*;
другие бактерии: энтерококки, C. urealyticum
* Определение вида грибов и постановка чувствительности к антимикотическим средствам в этот анализ не входит (при подозрении на грибковую инфекцию назначается тест № 442).
Литература
1. Асланов Б. И. и др. Рациональное применение бактериофагов в лечебной и противоэпидемической практике. Методические рекомендации. – 2022.
2. Белобородов В. Б. и др. Программа СКАТ (Стратегия Контроля Антимикробной Терапии) при оказании стационарной медицинской помощи. Методические рекомендации для лечебно-профилактических учреждений Москвы //Consilium Medicum. – 2017. – Т. 19. – №. 7-1.
3. Боронина Л. Г. и др. Применение инновационных методов для диагностики бактериурии при инфекциях мочевыводящих путей //Вестник Уральского государственного медицинского университета. 2016.№ 1-2. – 2016.
4. Боронина Л. Г. и др. Ускоренное бактериологическое исследование мочи и диализата при диагностике инфекций мочевыводящих путей у детей //Тихоокеанский медицинский журнал. – 2023. – №. 1 (91). – С. 55-58.
5. Драпкина О. М. и др. Методические рекомендации по рациональной антибиотикотерапии при инфекционных заболеваниях. – 2019.
6. Клинические рекомендации. Бактериологический анализ мочи. – 2014.
7. Клинические рекомендации. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам. Версия-2018-03.
8. Колясникова Н. М. и др. Бактериологический посев мочи за 4 часа с применением метода лазерного светорассеяния: сравнение с традиционным посевом на чашки Петри //Поликлиника. – 2015. – №. 6-1. – С. 85-88.
9. Рекомендации МАКМАХ. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам (2021). Версия 2021-01.
10. Яковлев С. В. и др. Стратегия и тактика рационального применения антимикробных средств в амбулаторной практике. Евразийские клинические рекомендации. 2016 год //Педиатрия. Приложение к журналу Consilium Medicum. – 2017. – №. 1.
11. Sharma B. et al. Evaluation of an automated rapid urine culture method for urinary tract infection: Comparison with gold standard conventional culture method //Indian Journal of Medical Microbiology. – 2023. – Т. 42. – С. 19-24.
